原文
，卷:14(6)

部分根区干燥灌溉条件下大豆菌根物种共生关系的评价

Nadia Dorostkar和Alireza Pirzad^＊

乌尔米亚大学农学院农学系，乌尔米亚，伊朗

*通信:: 此前Pirzad，乌尔米亚大学农学院农学系，伊朗乌尔米亚，电子邮件: (电子邮件保护)

收到:2018年10月29日;接受:2018年11月7日;发表:2018年11月15日

引用:李志刚，李志刚。菌根共生关系的研究进展物种部分根区干燥灌溉系统下的大豆。生物技术学报，2018;14(6):178。

摘要

研究大豆植株的菌根共生关系。Williams)在不同灌溉系统中，基于随机完全块设计(RCBD)，于2015年在乌尔米亚大学进行了分块试验。以固定部分根区干燥灌溉(CPRD)、垄沟灌溉(APRD)和交替部分根区干燥灌溉(APRD)灌溉为主要样地，以菌根真菌为主物种(未接种对照、mosseae、Rhizophagus intraradices和Simiglomus hoi)作为3个重复的子样地。灌水方式和菌根种类对叶面积指数、比叶面积、叶面积比、叶重率、种子蛋白质、叶片可溶性总糖、叶脯氨酸、单株结数、荚果重和油率无显著影响。各灌溉系统叶片磷钾含量基本相同。虽然APRD的叶绿素指数(SPAD)最高，但收获指数百分比最高的是垄作系统。结果表明，接种海参的植株SPAD、叶磷和叶钾含量最高，但收获指数(产籽量和产油量)百分比最高的是接种海参。互作效应显著，大豆植株对菌根的反应各不相同物种在不同灌溉系统下。然而，在APRD和垄沟灌溉系统中，mosseae菌根化的根系定植量和叶片氮含量分别最高。3种沟灌菌根植物均获得了大豆植株的最佳株高、百粒重和产量(生物产量、种子产量和油分产量)物种真菌。菌根大豆植株中亚麻酸和亚油酸含量较高，而无菌根大豆植株中甘油酸、油酸(不饱和脂肪酸)、肉豆蔻酸、棕榈酸和硬脂酸(饱和脂肪酸)含量较高。垄沟灌溉以棕榈油酸和花生油酸为主，APRD以亚麻油酸和亚油酸为主，CPRD以加油酸、油酸、肉豆素、棕榈油酸和硬脂酸为主。

关键字

皱纹;菌根;种子蛋白质;SPAD;不饱和脂肪酸

简介

世界大豆年度产量(大豆(蚕豆科)产量约3.34亿吨，收获面积为1.21亿公顷[1]。大豆含有多种蛋白质，对发芽的种子具有独特的特性。大豆食品的特点部分归因于大豆中的蛋白质[2]。大豆植株可与丛枝菌根真菌(AMF)形成共生关系[3.]，但对不同灌溉系统的这种关系知之甚少。

农业是世界上最大的用水部门。因此，应在灌溉中实施节水方法和技术。近年来，节水灌溉已被用于提高水资源产量[4]。两种不同的灌溉方式管理采用交替垄沟和常规垄沟进行地表灌溉。交替垄沟灌溉时，一个垄沟灌溉，相邻垄沟不灌溉。在传统的垄沟灌溉中，每条垄沟都要灌溉。垄沟两端封闭，两个垄沟均防止径流管理系统(5]。沟灌是农民在无水限制地区甚至是有限水地区使用的灌溉方法。在这种方法中，作物获得充分的蒸散需求以获得最大产量[6]。在地表灌溉方法中，垄沟灌溉用于行播作物。垄沟灌溉有两种方式，一种是传统垄沟灌溉，另一种是根据可利用的水资源进行垄沟灌溉[7]。部分(常或交替)根区干燥灌溉是减少作物全灌水量的节水灌溉方法[4，8]。

热带土壤作物生产需要大量化肥，对环境造成严重影响[9]，从而促进营养物质的释放和有效性植物营养［10]。丛枝菌根真菌极大地增强了植物对磷等相对固定和存在于土壤中的营养物质的吸收能力低在土壤溶液中的浓度，因此在植物生长中起着至关重要的作用[11，12]。菌根菌丝直径为2-5 μm，可穿透根毛无法到达的土壤孔隙(10-20 μm)，吸收不可利用的水分[13]并从所有生态系统的土壤中获取养分[14]。有研究报道，菌根大豆植株比非菌根植株干旱荚果败育率低，因为同时增加了光合作用、光合储存和输出[15]。据报道，菌根植物较高的根长和根体积可以增加这些植物的吸水性[16，17]。

本研究的目的是评价三种方法的效果物种含部分根区干燥的三种垄沟灌溉系统下菌根真菌对大豆产量(定性和定量)的影响。

材料与方法

为评价不同灌溉制度对大豆生长的影响(大豆l .简历。2015年，在伊朗乌尔米亚大学(Urmia University, 37.53 N, 45.08 E，海拔1320 m, West Azarbayjan Province, Urmia, Iran)，基于随机完全块设计(RCBD)，进行了三次重复的裂区实验。以固定部分根区干燥灌溉(CPRD)、垄沟灌溉和交替部分根区干燥灌溉(APRD)为主要样地，以菌根灌溉物种（漏斗形花菜，根茎食用菌和非amf接种处理)作为亚图。菌根接种体，无菌沙、菌根菌丝和孢子的混合物(每克20个孢子)^－1接种体)和定殖根碎片，由乌尔米亚大学植物保护系提供。

样品由两层0-30和30-60厘米深的粘土质地的土壤组成。土壤理化特性，如图所示表1，已确定[18]。试验场地的气候属性包括降雨量、相对湿度和温度图1．

图1:伊朗乌尔米亚地区2014-2015年生长季总降雨量、月平均气温和相对湿度。

取样深度(cm)	0 30	30 - 60
pH值	7.65	7.73
电子商务(dS.m^－1）	1.40	1.40
有机碳(%)	0.52	0.48
有机物(%)	0.9	0.80
碳酸钙(%)	8.00	12.00
粘土(%)	50.00	51.00
淤泥(%)	33.00	32.00
砂(%)	17.00	17.00
结构(%)	粘土	粘土
K (mg.kg^－1）	238.0	88.00
P (mg.kg^－1）	22.80	15.90
现场容量%	0.22	0.22

表1:试验场地土壤特性。

生物肥料(AMF接种剂)通过植物种子放入孔中(每孔5克)，并轻轻覆盖土壤。对于未接种amf的植物，种子不接种。大豆种子于2015年4月26日在200 × 300厘米大小的地块上，在4厘米深的土壤中手工播种，植株间距为50 × 8厘米。在试验过程中，对植物的生长过程进行了仔细监测，并对杂草进行了人工控制。播种后，对所有植株进行苗前灌溉。

生长季结束时，10月12日收获垄沟种子，10月30日收获CPRD和APRD种子。每块地采30株，将根系与嫩枝分离。大豆种子在R8发育阶段未成熟时收获，此时豆荚有完整大小的种子。在此阶段，测定了10株植物的株高、单株结数和茎粗[19]。将30株植物的地上部分在70°C的强制风箱中干燥2天，以荚果重和生物产量计算干重。将收获植物的种子分别加权为种子产量。为了测量100颗种子的重量，我们为每个实验单元称重了4个100颗种子的样本。

采用索氏仪和乙醚溶剂提取大豆籽油。2]。油的产量计算如下:

出油率=出油率×种子产量

叶绿素指数(SPAD)用optics - sciences (ccm-200 plus)测定。每个实验单元测定10株植物的根定殖率。新鲜根用10%氢氧化钾(KOH)在90°C下清除10分钟，然后用0.05%乳酸-甘油-台番蓝染色[20.]。采用网格线相交法[21]。用分光光度计(PD-303)在470 nm处测定叶片磷含量[22]。采用火焰光度计法测定叶片钾含量(临床pfp7) [22]。为了获得叶片和种子的氮含量，我们使用凯氏定氮法[23]。种子蛋白按以下公式计算[24]:

%氮=(滴定耗酸量× 0.0014)/样品重量× 100

%蛋白质=%氮× 5.71

样品脯氨酸的提取和吸收使用岛津02-120-紫外分光光度计在520 nm范围内测量。茚三酮(2,2 - dihydroxyindane-1,3-dione, CAS编号485-47-2)广泛用于测定脯氨酸。在低pH时，发色体呈红色，在520 nm处有吸光度峰。为了减少背景噪声(例如，高水平的花青素可能会干扰定量)，显色原通常使用甲苯提取[25]。特定量的酒精提取物(2毫升)与3毫升蒽酮(150毫克蒽酮，100毫升72%硫酸，W/W)混合。将样品放入沸水浴中10分钟。总计可溶性糖用分光光度计在625 nm处测定吸光度。的内容可溶性糖均采用葡萄糖标准[26]。采用以下公式测定大豆的生理参数[27]:

叶面积指数(LAI)=每平方米植物的叶面积

比叶面积(SLA)=单株叶面积/单株叶重(m²公斤^－1）

叶面积比(LAR)=单株叶面积/株重(m²公斤^－1）

叶重率(LWR)=叶面积比/比叶面积(gg^－1）

以实验单元收获的30株植物种子为基础，计算了光合产物在种子(Seed HI)和油(oil HI)中的分配和收获指数。

种子HI=种子产量/生物产量

油分HI=种子油分产量/生物产量

采用一般线性法对数据进行方差分析模型(GLM)过程。采用MSTAT-C软件包进行LSD测试比较治疗手段。

结果与讨论

方差分析表明，灌溉制度对单株结数、种子HI和油HI (P≤0.05)和SPAD (P≤0.01)均有显著影响。而菌根真菌对SPAD、叶磷和油HI (P≤0.05)、叶钾和种子HI (P≤0.01)均有显著影响。“灌溉系统×菌根种”对定殖量、叶氮、种子产量和油分产量(P≤0.05)和株高、茎粗、百粒重和生物产量(P≤0.01)均有显著交互作用(P≤0.01)(表2模拟)．

S.O.V	df	SPAD	赖	SLA	守护神	轻水反应堆	殖民
块	2	8.53	0.011	0.001	0.0001	0.0033	221.77
灌溉系统(IS)	2	231.43 * *	0.008^ns	0.003^ns	0.0082^ns	0.0066^ns	403.11^ns
沟	-	4.90摄氏度	3.637^一个	14.183^一个	5.8938^一个	0.4144^一个	49.08^一个
CPRD	-	9.69^b	3.195^一个	14.667^一个	6.7122^一个	0.4569^一个	38.08^一个
APRD	-	13.67^一个	3.282^一个	13.864^一个	6.2601^一个	0.4529^一个	46.75^一个
错误^一个	4	0.41	0.004	0.007	0.0094	0.0015	89.44
菌根物种(女士)	3.	31.14 *	0.014^ns	0.006^ns	0.0062^ns	0.0003^ns	516.10 * *
Non-AMF接种	-	10.67^一个	2.923^一个	13.108^一个	5.7221^一个	0.4368^一个	45.88^ab
f . mosseae	-	9.08^ab	3.657^一个	14.487^一个	6.3031^一个	0.4372^一个	54.66^一个
r . intraradices	-	6.94^b	3.674^一个	14.594^一个	6.5790^一个	0.4481^一个	37.22^b
美国海	-	11.01^一个	3.231^一个	14.762^一个	6.5506^一个	0.4434^一个	40.77^b
Is - ms	6	8.34^ns	0.005^ns	0.015^ns	0.0128^ns	0.0010^ns	241.07 *
错误^b	18	8.08	0.005	0.006	0.0058	0.0006	94.22
的简历(%)	-	30.16	11.09	6.59	8.93	5.58	21.74

Ns:不显著，*和**:在5%和1%概率水平显著

表2:灌溉系统与菌根效应的方差分析(平方均值)物种对大豆(Glycine max L. cv.)生理性状和根系定殖的影响。Williams)。

S.O.V	df	叶P	叶N�	叶�K	种子蛋白质�	可溶性糖�	脯氨酸
块	2	0.0013	0.07	0.267	０．７５	5422.4	13.867
灌溉系统(IS)	2	0.0007^ns	0.033^ns	0.059^ns	0.95^ns	319.37^ns	0.677^ns
沟	-	0.1703^一个	5.808^一个	1.05^一个	32.39^一个	178.11^一个	17.135^一个
CPRD	-	0.1759^一个	5.731^一个	1.07^一个	32.09^一个	178.53^一个	17.459^一个
APRD	-	0.1854^一个	5.706^一个	1.18^一个	31.82^一个	169.39^一个	17.598^一个
错误^一个	4	0.0003	0.085	0.049	０．７５	1968.64	0.547
菌根物种(女士)	3.	0.0028 *	0.050^ns	0.250 * *	0.87^ns	2105.22^ns	0.957^ns
Non-AMF接种	-	0.1511^b	5.651^一个	1.205^一个	31.73^一个	190.02^一个	17.809^一个
f . mosseae	-	0.1841^一个	5.830^一个	0.856^b	32.03^一个	170.08^一个	17.017^一个
r . intraradices	-	0.1834^一个	5.774^一个	1.121^一个	32.17^一个	185.03^一个	17.336^一个
美国海	-	0.1902^一个	5.740^一个	1.211^一个	32.48^一个	156.24^一个	17.428^一个
Is - ms	6	0.0008^ns	0.095 *	0.056^ns	1.33^ns	1687.90^ns	1.551^ns
错误^b	18	0.0006	0.025	0.024	0.58	1035.82	0.652
的简历(%)	-	13.72	2.76	14.27	2.37	18.35	4.64

Ns:不显著，*和**:在5%和1%概率水平显著

表2 b:灌溉系统与菌根效应的方差分析(平方均值)物种大豆的营养成分及渗透压(大豆l .简历。Williams)。

S.O.V	df	植物�高度	阀杆直径�	每株结点数	豆荚重量	100 -种子重量
块	2	127.63	0.407	0.258	0.075	6.836
灌溉系统(IS)	2	676.04 * *	0.053^ns	8.458 *	0.127^ns	18.073 * *
沟	-	58.25^一个	7.561^一个	18.691^一个	913.5^一个	13.475^一个
CPRD	-	44.58^b	7.693^一个	17.400^一个	857.8^一个	12.215^b
APRD	-	46.05^b	7.611^一个	17.116^一个	586.8^一个	11.021摄氏度
错误^一个	4	30.56	0.997	1.205	0.025	1.034
菌根物种(女士)	3.	2.94^ns	1.331 * *	0.089^ns	0.025^ns	1.648^ns
Non-AMF接种	-	49.12^一个	8.117^一个	17.778^一个	704.8^一个	11.636^一个
f . mosseae	-	49.16^一个	7.685^ab	17.733^一个	820.0^一个	12.595^一个
r . intraradices	-	50.23^一个	7.204^b	17.600^一个	884.5^一个	12.483^一个
美国海	-	50.01^一个	7.480^b	17.833^一个	734.8^一个	12.234^一个
Is - ms	6	140.29 * *	1.133 * *	2.513^ns	0.029^ns	2.773 * *
错误^b	18	28.31	0.215	1.866	0.015	0.674
的简历(%)	-	10.72	6.09	7.7	4.37	6.709

Ns:不显著，*和**:在5%和1%概率水平显著

表2 c:灌溉系统与菌根效应的方差分析(平方均值)物种大豆的形态性状(大豆l .简历。Williams)。

S.O.V	df	生物产量	种子产量	种子嗨	石油嗨	石油百分比	石油�收益率
块	2	1599649.03	651730.6	25.09	1.384	2.687	16343.2
灌溉系统(IS)	2	4784253.00^ns	1780393.22 *	124.48 *	16.422 *	33.175^ns	102300.57 *
沟	-	4845.2^一个	1885.1^一个	37.98^一个	7.194^一个	18.833^一个	360.37^一个
CPRD	-	3943.7^一个	1416.0^ab	35.58^一个	6.530^一个	18.156^一个	265.25^ab
APRD	-	3628.5^一个	1121.3^b	31.61^b	4.919^b	15.675^一个	175.74^b
错误^一个	4	1172861.8	249228.61	8.73	1.361	8.758	11976.71
菌根物种(女士)	3.	369834.97^ns	594746.99 *	178.01 * *	6.980 *	0.554^ns	26259.98 *
Non-AMF接种	-	4126.9^一个	1311.2^ab	32.02^b	5.557^b	17.404^一个	228.12^b
f . mosseae	-	4200.7^一个	1616.5^ab	37.85^一个	6.749^ab	17.507^一个	298.19^ab
r . intraradices	-	4357.5^一个	1759.4^一个	39.78^一个	7.170^一个	17.919^一个	326.92^一个
美国海	-	3871.5^一个	1209.5^b	30.58^b	5.381^b	17.389^一个	215.24^b
Is - ms	6	2517164.04 * *	481861.44 *	28.15^ns	2.087^ns	5.701^ns	22744.35 *
错误^b	18	559844.47	142932	22.77	1.776	5.69	5729.82
的简历(%)	-	18.07	25.64	13.61	21.44	13.58	28.33

Ns:不显著，*和**:在5%和1%概率水平显著

表2 d:灌溉系统与菌根效应的方差分析(平方均值)物种大豆产量和收获指数(大豆l .简历。Williams)。

灌溉系统和菌根种类对叶面积指数(LAI)、叶面积指数(SLA)、叶面积指数(LAR)、叶面积指数(LWR)、种子蛋白质、可溶性糖、脯氨酸、荚果重和油分等生理参数的影响不显著。LAI、SLA、LAR、LWR、籽粒蛋白质、可溶性糖、脯氨酸、荚果重和油分率的总平均值分别为3.371、14.238 m²公斤^－1， 6.2887米²公斤^－1， 0.4414 g-1, 32.1%， 175.34 mg g^－1， 17.39 mg g^－1， 786.03 kg ha^－117.55% (表2模拟)．

APRD灌溉的叶绿素指数最高(13.67 SPAD)， CPRD次之，垄沟灌溉最低。大豆植株的叶绿素指数似乎依赖于水分供给。大豆叶片叶绿素含量最低r . intraradices(6.94 SPAD)对未接种amf的植株进行随访f . mosseae和美国海（表2一个)．

未接种对照植株叶片磷含量最低，为0.1511%物种在菌根真菌中，大豆叶片磷含量最高，与(表2 b)．

与其他两种真菌相比，在菌根植物中，叶钾含量急剧下降。植物接种r . inraradices和美国海叶片钾含量与对照大豆植株无显著差异。三种灌溉系统在不考虑菌根作用的情况下，叶片钾磷含量相同(表2 b)．垄沟灌溉和CPRD灌溉系统的种子HI和油HI均高于APRD灌溉系统。未接种对照植物与菌根植物之间无显著差异(美国海)种子HI和油HI。在植物中接种f . mosseae和r . intraradices种子HI和油HI均高于非amf接种(表2 d)．

接种APRD系统的根定殖率最高(58.67%)f . mosseae和CPRD一样多。另外两个物种与未接种amf的植株相比，在大豆根部定植的丛枝菌根真菌较少。未接种对照植株与接种菌根植株间无显著差异r . intraradices和美国海就殖民化百分比而言(图2)．

图2:大豆根系定殖率均值比较(大豆l .简历。Williams)对灌溉系统菌根种类的影响:不同字母在P≤0.05处差异显著。

接种植物叶片含氮量f . mosseae均高于垄作系统下的其他处理，其次接种美国海和r . intraradices,分别。CPRD菌根植株与未接种对照植株无显著差异。在APRD中，接种菌根植株的叶片氮含量最高(5.92%)r . intraradices（图3)．

图3:大豆叶片氮含量均值比较(大豆l .简历。Williams)受灌溉系统菌根物种的影响。不同字母在P≤0.05时差异显著。

最高的植物为菌根(63.83 cm) (r . intraradices)植物与接种一样高美国海和f . mosseae．所有灌溉系统未接种对照植株株高相同。CPRD和APRD的菌根植物间差异不显著(图4)．

图4:大豆株高均值比较(大豆l .简历。Williams)受灌溉系统菌根物种的影响。不同字母在P≤0.05时差异显著。

水分亏缺胁迫能够促进植株的次生生长(茎粗)，因此在APRD和之后的CPRD中，未处理的植株茎粗均大于3种接种的植株物种真菌。在垄沟系统适当的供水条件下，接种植株茎粗与未接种amf植株茎粗相同(图5)．

图5:大豆茎粗的均值比较(大豆l .简历。Williams)对灌溉系统菌根种类的影响:不同字母在P≤0.05处差异显著。

在垄沟系统中，植物接种r . intraradices百粒重最大(14.71 g)，接种黄豆的百粒重最大(14.71 g)美国海．在APRD和CPRD系统中，菌根植株的百粒重与对照植株无显著差异。APRD灌溉低于CPRD灌溉(图6)．

图6:大豆百粒重均值比较(大豆l .简历。Williams)对灌溉系统菌根种类的影响:不同字母在P≤0.05处差异显著。

接种该菌的大豆产量最高，生物产量为6131公斤/公顷，种子产量为2607公斤/公顷r . intraradices在垄沟灌溉之后f . mosseae和美国海接种。在其他灌溉系统(CPRD和APRD)中，菌根植物的生物产量和种子产量与未处理对照植物没有显著差异(图7和8)．

图7:大豆生物产量均值比较(大豆l .简历。Williams)对灌溉系统菌根种类的影响:不同字母在P≤0.05处差异显著。

图8:大豆种子产量均值比较(大豆l .简历。不同字母在P≤0.05处有显著差异。

均数比较表明，沟灌菌根可获得最高籽油产量(514.9 kg/ha)。r . intraradices)植物。垄沟灌溉的产量高于CPRD，其次是APRD。在菌根型植物中，接种的油产量最低美国海不论灌溉系统(图9)．

图9:大豆油分产量均值比较(大豆l .简历。Williams)对灌溉系统菌根种类的影响:不同字母在P≤0.05处差异显著。

在CPRD灌溉系统中接种的非amf对甘油酸、油酸(不饱和脂肪酸)、肉豆蔻酸、棕榈酸和硬脂酸(饱和脂肪酸)的浓度最高。在无amf接种的APRD和接种amf的垄沟灌溉中，棕榈烯酸和花生酸的浓度分别最高。而亚麻酸和亚油酸在菌根植物中最高。亚麻酸和亚油酸的不饱和脂肪酸,脂肪酸总量的55%以上的大豆,被发现在丛枝菌根接种建立最大百分比APRD灌溉系统的植物。油酸是一种C18:1不饱和脂肪酸，占脂肪酸总量的27%，是大豆油的第三大成分(表3)．

灌溉	菌根	脂肪酸
		不饱和��					饱和��
		烯	9 -十六碳烯	亚麻	亚麻油酸	油的	肉豆蔻	十六烷酸	Arashidic	硬脂
		C20:1	C16:1	C18:3	C18:2	C18:1	C14:0	0	C20:0	C18:0
CPRD	Non-AMF控制	0.68	0．1	4.8	44.96	29.29	0.11	10.67	0.39	6.96
CPRD	AMF-inoculated	0.53	0.07	5.74	45.15	28.94	0.08	10.45	0.49	6.55
沟	Non-AMF控制	0.58	0.14	5.08	45.1	28.92	0.07	10.37	0.49	6.78
沟	AMF-inoculated	0.29	-	5.33	40.95	22.79	0.07	8.31	0.61	3.96
APRD	Non-AMF控制	0.53	0.16	6.9	48.9	26.6	0．1	10.03	0.49	4.89
APRD	AMF-inoculated	0.49	0.13	7.36	48.98	25.83	0.09	9.74	0.41	5.09

表3:在CPRD、沟渠和APRD灌溉系统中，amf接种和非amf接种植物的大豆脂肪酸成分。

讨论

据报道，干旱条件下叶绿素指数较低是由于叶绿素合成较低而叶绿素分解较高[15]。叶绿素的损失伴随着叶肉叶绿体的破坏，导致光合速率降低[28]。接种AM真菌的植物对磷的吸收增加，可能是由于AM真菌的根系体积增大，能够进入更宽的根际，从而促进不溶性磷的吸收和溶解[29-31]。在接种amf的植物中，P和K吸收的增加引起了对水分亏缺胁迫的抗性。因此，菌根植物对压力与K含量密切相关[32]。

有限灌溉稀释了叶片磷，因此重度胁迫植物的叶片磷含量最低[33]。接种大豆叶片磷积累的研究真菌物种均高于未接种amf的对照(表2 b)．HI均值比较表明，垄沟灌溉、CPRD灌溉和APRD灌溉方式之间存在显著差异。因此，我们得出的结论是，沟内、CPRD和APRD方法，通过减少灌溉间隔，可以获得更高的粮食产量，而不是生物产量，并提高HI [34]。灌溉不足是限制植物生长的因素之一，从而减少干物质的产生，并干扰碳水化合物的行为，以降低HI [35]。

此前有报道称，接种植物的根定殖水平显著提高r . intraradices和f . mosseae．结果表明，接种了AMF的植物根定殖率最高，分别为83%和77%r . intraradices和f . mosseae，分别在蒸发皿蒸发120毫米后进行灌溉(严重压力)[33]。菌根共生的建立和作物生产性能的提高可能是由于菌根菌丝的进一步延伸和土壤中宏观和微观营养元素的更多可利用性[36，37]。结果表明，接种AMF可使大豆根定殖率提高20%左右;植物组织营养成分分析表明，接种后植株的磷、氮含量均有所提高，产量也有所提高[38]。与未接种amf的植物相比，定植植物产生了更多的干物质和更少的水分消耗。另一方面，菌根植物比未接种的植物需要更少的水才能产生1g干物质。这表明菌根植物能够保持较高的组织含水量，同时具有更强的抗旱性[39，40]。对照处理(垄沟灌溉)的产量最高，其次是交替垄沟灌溉(APRD)和固定垄沟灌溉(CPRD)(图8)，这与Tagheianaghdam等人发表的结果一致。[34]。

干旱引起的株高下降可以通过菌根和细菌接种等生物处理来弥补。另一方面，在每个灌溉水平下，这些处理比非菌根植物延长更多[33]。

早期研究显示，菌根能获得最高的种子和生物产量(g . intraradices)浇水充足的植物[33]。在所有灌溉制度下，非菌根植物的种子产量和生物产量最低，与细菌感染的灌溉制度相似。结果表明，与无菌根灌溉相比，三种灌溉方式下菌根共生均显著提高了生物量、种子和籽油的产量。这些报道表明AM定殖是植物发育的最重要因素，特别是在水分亏缺条件下，因为AM定殖在营养和水分亏缺中起着至关重要的作用管理植物的[41，42]。对两个大豆品种的AMF定殖的首次评估表明，接种植物的根定殖量比未接种的对照植物多20% [38]。这一结果表明，部分根区干燥处理与常规亏缺灌溉相比具有更高的产量效益，Sepaskhah和Ahmadi也报道了这一结果[43]。接种amf对生物质产量或含油量取决于物种植物或真菌。以往的研究已报道了接种amf对提高产量的定量和定性的有益作用[45，46]。

利益冲突

作者声明没有利益冲突。

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